脂质体是磷脂分散在水中时形成的脂质双分子层，又称为人工生物膜。阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用将DNA分子包裹入内，形成DNA—脂复合体，也能被表面带负电荷的细胞膜吸附，再通过膜的融合或细胞的内吞作用，偶尔也通过直接渗透作用，DNA传递进入细胞，形成包涵体或进入溶酶体。其中一小部分DNA能从包涵体内释放，并进入细胞质中，再进一步进入核内转录表达。
Lipo是最常见的广谱脂质体转染试剂，以其操作简单、转染效率高、对细胞毒性较低等优点，在各大高校实验室、研究所等都得到广泛的使用。下面将以24孔板对应用量为例，简单介绍DNA转染哺乳动物细胞的操作方法。
1.实验用品
1.1主要试剂：
LipofectamineTransfectionReagent（Invitrogen）
Opti-MEMIReducedSerumMedium（Gibco-）
1.2主要耗材：
无菌枪头，一次性移液管，1.5mLEP管，15mL离心管，细胞计数板，24孔板
2.实验操作
2.1细胞准备
1)贴壁细胞：转染前一天，在μL无抗生素的培养基中接种细胞，约0.5-2×个/孔。
2)悬浮细胞：转染前一天，在μL无抗生素的培养基中接种细胞，约4-8×个/孔。
2.2DNA—脂复合体配制
1)准备两支1.5mLEP管（标记管1和管2），加入50μLOpti-MEMI低血清培养基（如无，可使用其他无血清培养基代替）。
2)取1μg目的质粒（DNA），加入管1稀释，轻轻混匀。
3)充分吹打混匀Lipofectamine原液管，按照DNA（μg）与Lipo（μL）添加比例1:2-1:3，取2-3μLLipo悬液加入管2稀释混匀，室温下静置5min。
4)将管1与管2合为一管，体积为μL，充分混合，室温下静置20min。
5)小心吸取管内的μL复合体，缓慢滴加入待转染的孔内（此时孔内细胞汇合度或细胞密度约在90%以上），轻轻摇匀并放置培养箱培养。
2.3细胞观察及终止转染
1)培养4-6h后，观察细胞状态，并更换新鲜培养基，放置培养箱中继续培养。如贴壁细胞变圆漂浮，换液时则需收集上清中的细胞，离心后将细胞沉淀接种回孔内。备注：如细胞属于较难转染的类型，可适当延长细胞转染时间，不超过24h。
2)24-48h后可观察细胞状态及转染效率，并根据具体实验要求进行后续药筛等工作。
作者：海星生物
