体外分离纯化小鼠肺泡Ⅱ型上皮细胞
小鼠肺泡Ⅱ型上皮细胞(TypeⅡalveolarepithelialcells,AECⅡ)分布于肺泡的表面,其数量占肺细胞总数的16%,但它仅覆盖肺泡表面积的5%。常规分离纯化小鼠肺泡Ⅱ型上皮细胞的步骤如下:
1.酶消化法分离小鼠AECⅡ:Balb/C小鼠经脱颈处死后完整取下肺组织,剪成1mm3大小,D-Hanks漂洗至上清清亮;移肺组织块入无菌青霉素小瓶,按0.5mL/只小鼠加入0.25%的分散酶(含0.01g/LDNaseΙ和5%胎牛血清),4℃过夜后37℃继续孵育2-4h,大部分组织块被消化为细胞悬液,补充适量5%胎牛血清的DMEM/F12培养基后吸管充分吹打使细胞脱落,不锈钢筛网过滤细胞悬液,4℃、r/min离心5min,收集细胞。含10%的DMEM/F12悬溶细胞并计数,锥虫蓝染色了解细胞活性。
2.小鼠AECⅡ的纯化和培养:将肺组织细胞悬液按3x有核细胞/mL接种入小鼠IgG包被平皿,37℃、5%CO2培养箱培养,置37℃、5%CO2培养箱内孵育2-2.5h;吸取未黏附的细胞,r/min离心4min,收集细胞。DMEM/F12完全培养基悬浮纯化的细胞,调节细胞浓度至1x个/mL,并按4x个/cm2密度接种于Ι型Collagen包被的平皿中;37℃、5%CO2培养箱内培养24h,换液去除未贴壁细胞,继续培养3-5d。光镜观察细胞生长状态和形态特征。
3.透射电镜观察:纯化细胞悬液,经离心沉淀后2.5%戊二醛固定,PBS漂洗,丙酮脱水,1%四氧锇酸后固定,常规包埋、切片、染色后透射电镜观察。
4.免疫荧光染色鉴定小鼠AECⅡ:分别用特异性标记物SP-C、CCSP鉴定小鼠AECⅡ、Clara细胞。取培养36-48h细胞爬片常规固定、封闭、洗涤;抗SP-C抗体(1:)、抗CCSP抗体(1:)37℃孵育1h后4℃过夜;PBS洗涤3次后分别用FITC、RBITC荧光标记的不同来源的二抗(1:)37℃孵育60min;PBS洗涤3次;1mg/LDAPI细胞核复染10min;缓冲甘油封固后激光共聚焦显微镜观察。同时,设无一抗孵育组作对照。
值得注意的是,酶消化结合免疫黏附纯化法分离、纯化小鼠AECⅡ较为常用。常用的酶有胰蛋白酶、弹性蛋白酶、胶原酶、分散酶等。其中胰蛋白酶较为常用,但其对细胞损伤较大,弹性蛋白酶价格昂贵不易获得,而胶原酶对细胞损伤较小,且消化充分,但成纤维细胞较多,增加纯化难度。
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